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获得高质量土壤RNA的10个建议

来源:深圳市安必胜科技有限公司 转载请注明出处【字号:

前面的文章我们介绍了如何提取土壤DNA。大篇幅详细讲解了影响DNA得率和纯度的研磨均质化学试剂(重点是裂解缓冲液)等问题。做DNA远没有做RNA压力大。不用太担心降解,得率还挺高。

RNA就不一样。。。

提取土壤RNA是环境分子生物学研究最难的研究方法之一。RNA提取本身就是件艰巨的任务,提取土壤的RNA挑战更大。最大的困难之一是土壤RNA得率。从土壤中获得RNA远比DNA少,前者仅有后者的10-20%,所以需要比提DNA更多的加样量。因此需要用更大的研磨管(15ml)和更大的离心机。

另一个大问题是腐植酸等抑制因子的污染。RNA实验对纯度要求很高,当逆转录寻找低拷贝数基因时,你无法稀释RNA样品。要求加入反应体系中的RNA浓度足够高且不能含有抑制因子。

提取土壤RNA需要特殊条件

因此,MO BIO开发出了一套不使用二氧化硅离心柱的方法来提取土壤RNA。下面讨论关于RNA PowerSoil Kit以及何如获得更好的提取效果。

这套操作流程包含了多种方法。IRT技术去除抑制因子,酚氯仿法最充分地裂解微生物细胞,阴离子交换技术更高的纯化质量。最终获得非常干净的RNA最大化地满足RT-PCR的需要。

让我们一起来讨论如何使用这些技术,并尽可能少出错返工。每个土壤样品质地、水分含量、微生物丰度都不一样,在提取过程中出现的状况不尽相同。下面我们重点讨论几个容易出错的关键步骤,以及做哪些修改可以获得更好的提取效果。

1. 样品起始量

对于绝大多数类型土壤,2g土壤是最大的样品起始量。然而,对于底泥这类含水量较高的土壤,本身实际土壤含量较低,微生物含量也不高,我最多用到5g的起始量。如果样品加入到研磨珠套管后,发现上面有一层水。最好先离心并吸去多余的水分。

2. 酚氯仿异戊醇Phenol: Chloroform(步骤3):

使用正确的PCI非常重要,在试剂盒操作说明书中我们给出了一些使用建议。PCI比例必须为25:24:1,pH介于6.7-8,并保存在pH8.0的TE缓冲液中。许多人提取动物组织和细胞习惯性地只使用低pH值的苯酚来提取RNA。而对于土壤,pH中性的苯酚会合适。

3. 优化异丙醇浓缩(步骤9):

PCI裂解步骤后加入SR3溶液,下一步加入异丙醇沉淀总核酸。如果你在做底泥,加完SR3溶液后总体积可能超过5ml。增加SR4(异丙醇)的使用量,至与步骤8获得的样品体积相同,以保证充分沉淀核酸。

4. 异丙醇沉淀的环境温度(步骤9):

原有的操作说明建议-20℃冷冻样品。盐浓度高的样品核酸沉淀步骤请在室温下进行。冷冻样品沉淀的盐分,会改变阴离子交换离心柱上的核酸吸附绑定条件。你可以从沉淀物中看出来是否有盐分沉淀。正常的RNA沉淀表面平坦有光泽,若沉淀明显较大且表面有壳,表明有盐分沉积。底泥样品水分大,就算是淡水湖也好,多余的水分会含盐。若你的土壤类型在-20℃下孵育能获得更理想的得率,请按照原方法进行。

暂停点:我曾经把步骤9的孵育时间延长超过30min,甚至过夜,最终RNA依然完好。我不建议每个样品都延长孵育时间,至少你的土样样品需要测试才能知道是否影响RNA质量。只在特殊情况下,你可以稍微在此步骤暂停。

5. 阴离子交换离心柱溶液自然滴下(步骤14)

最后的RNA回收步骤使用的离心柱装有树脂,溶液利用重力通过离心柱。有时溶液通过树脂的速度很慢,可适当施加正压加速流动。通常我们的做法是用5ml注射器针管缓缓加压,但流速不应该超过1滴每秒。

6. 摇、摇,摇匀SR5和SR6(步骤12):

SR5和SR6使用前必须充分摇匀。有些含有异丙醇的溶液静置会分层,使用前只要充分摇匀即可。

7. 节省洗提时间小提示(步骤16-20):

有时候我会直接洗脱到2ml Collection Tube,而不用15ml Tube。确保离心柱垂直放置不会倾覆。只有摸透了技巧才好这么弄,谢绝新手。

8. 最后异丙醇沉淀(步骤17):Final isopropanol precipitation (step 20):

从离心管中洗脱下来以后,加入异丙醇(SR4溶液)做最终沉淀。需要在-20℃孵育。此步必须在-20℃孵育(VS 室温)。此步可适当延长时间。

暂停点:若提取工作没办法继续完成,可在此步暂停过夜。样品在-20℃冷冻,RNA能稳定保存。

9. 沉淀RNA(步骤18):

离心异丙醇分离RNA,正常RNA沉淀应小而呈玻璃光泽。离心时所有的Tube管要朝向一致,以便于倒出异丙醇时迅速辨认RNA沉淀。晾干RNA沉淀步骤需要快速完成。通常我们的做法是在超净台中把Tube管倒置在吸水纸上。

10. 重悬RNA(步骤20):

现在,你有了漂亮的干燥沉淀。根据逆转录对体积的要求,重悬RNA。在我们实验室里头,若样品土壤微生物非常丰富,我们会用50-100μl水重悬(通常最终浓度为100-20ng/μl)。底泥或干燥土壤微生物含量低,为了提高最终RNA浓度,我们用25μl水重悬。这一步可操作性很高,请根据你的需要加入适合的水量重悬沉淀。

额外提示:

用SR6溶液洗脱RNA以后,离心柱滤膜还有DNA在。你可以用含有高浓度盐的SR8溶液(DNA Elution Accessory Kit组分)把基因组DNA洗脱下来。因为整个核酸提取过程动作相对温和,你可以获得更大分子量的DNA。阴离子交换离心柱的又一优势在于,你可以从同一个样品中先后提取到RNA和DNA。

再一个额外提示:RNA稳定性和土样保存:

我们常被问到采样后土样中RNA的稳定性,以及RNALater的使用。事实上RNALater并不兼容土壤。我们做过用RNALater在不同温度和时间下对土壤RNA的保护试验,结果发现随着保存时间的延长,RNALater会令土样释放出更多的腐植酸,粘附在RNA上与RNA共同吸附于阴离子交换离心柱滤膜上难以去除。保存的时间越长,样品颜色变得越深。

我们采样时使用LifeGuard Soil Preservation Solution对土壤RNA进行保护,并且在运输过程中能保证微生物结构稳定不变。

总结:

最具挑战性的样品提取就是土壤RNA。样品中RNA非常不稳定、含量很低,而且存在大量抑制因子和微生物源RNase。但是获得高得率干净RNA还是可以做到的。我希望以上十点小技巧能缩短你提取新土样RNA的摸索过程。要是你有更多提取诀窍,不妨告诉我们。我们乐意听到研究者通过某些步骤特定的修改获得他们想要的结果。

产品链接:RNA PowerSoil® Total RNA Isolation Kit

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